酪蛋白激酶(Casein kinase, CK)是一种多功能高度保守的丝/苏氨酸磷酸转移酶，在真核生物和酵母中大量表达、广泛分布[1]。与大多数蛋白激酶一样，CK最初是依据其纯化所需的底物(酪蛋白)而命名的，但后来证实酪蛋白并非CK在细胞内的天然生理性底物。因此, 有学者提出为避免对CK的生理功能产生误解，不再称其为“酪蛋白激酶”，只继续沿用其简称CK[2]。CK1、CK2可以通过二乙氨基乙基纤维素(DEAE-cellulose)色谱分析法分离纯化。CK1是用DEAE-cellulose在单价离子密度接近于0.007~0.13M时洗提出来的，CK2是在0.15~0.22M之间提取出来的。大量证据表明CK2在中枢神经系统中大量表达，并且参与神经发育、突触生成、突触传递、突触的可塑性调节等，并且在阿尔茨海默病、局灶性脑缺血、慢性酒精成瘾等疾病的病理生理机制中起着一定的作用。
1 CK2生物学特点 1.1 组成和结构CK2全酶是由2个催化亚基和2个调节亚基构成的异源四聚体，催化亚基为α、α′，调节亚基为β。目前已发现3种四聚体，包括α2β2，α′2β2和αα′β2。但是CK2并非必须以全酶形式存在并发挥催化作用。在某些物种和某些细胞中可能缺乏某种亚基，如果蝇和非洲爪蟾蜍的CK2缺少α′亚基[2]。在猪的肝脏、盘基网柄菌、霉菌等细胞中还存在着仅由α亚基构成的非典型结构。另外，在细胞中还存在着大量游离的α亚基，数量远多于结合β亚基形成复合体的α亚基[3]。
CK2的各个亚基在进化上高度保守。首先，α亚基的序列在哺乳动物和其他物种(酿酒酵母菌、玉米、果蝇等)间序列同源性较高；其次，α和α′亚基的序列尽管在羧基端有些不同，但两者的结构非常相近；最后，β亚基的cDNA顺序在果蝇、小鼠、大鼠、猪、牛和人类之间也高度一致[1, 4]。
1.2 转录信息CK2α、α′和β亚基是3个独特基因的产物。从酵母菌到人类的多个物种已明确了几个编码CK2亚基的基因。CK2α基因定位在染色体20p13，由13个外显子组成，具有一个称作管家基因的启动子区域，以及一个高GC含量、缺少TATA盒的多GC盒区域。CK2β基因在染色体6p21上，其外显子含有3个转录起始位点和1个翻译起始位点。此外，它的启动子区域包含多重GC盒、CpG岛和非典型位点的CAAT盒等。另外，CK2α′基因定位在染色体16上。CK2各个亚基的基因结构高度保守，进化时间接近3千万年[5]。
采用Northern blot技术已检测了多个物种的CK2α、α′和β亚基的mRNA。然而，各个亚基mRNA的比例与蛋白质水平的比例并不相符，其原因可能是1)因为mRNA有不同的非编码区域，因而稳定性、核质转运、翻译效率都可能不同，因而影响各个亚基的翻译；2)CK2各亚基mRNA还具有信号分子和核定位序列的编码区域，在经核质转运等处理后可能有的被水解或保留至翻译。
1.3 组织与细胞分布在大多数组织中CK2的两个催化亚基α、α′其一占优，有报道在脾脏、心脏、大脑中α亚基mRNA水平更高，而在肝、卵巢中α′亚基mRNA占优。但是β亚基mRNA水平与α、α′亚基的mRNA总量并不相符，β亚基的转录水平与α和α′亚基的转录水平可相差10倍。原因可能包括mRNA的稳定性、翻译效率有差异，且催化亚基并不都与β亚基结合成全酶而存在，因此，mRNA的拷贝数量并不能反映组织中CK2的分子水平[6]。
检测大鼠多种组织中CK2活性，证实在大脑和睾丸中CK2活性最高。皮质、中隔、海马、尾壳核、丘脑、嗅球、小脑等脑区以及脊髓，均有较高的CK2活性。CK2免疫反应阳性遍及大鼠的大脑[1, 3]。
CK2亚细胞分布的相关研究发现，在胞质和胞核中均有CK2免疫反应阳性。在增殖细胞中CK2在细胞核中有较强的活性，且细胞核中发现了多种CK2的底物，也证实了CK2在核质和核仁内可能具有一定的功能。在指数增生期的细胞中，CK2在细胞核中的水平约为细胞质水平的3~15倍，CK2胞核/胞质比值及全细胞总量约为静止细胞的2倍，依据检测手段和细胞状态的不同而略有差异。这与CK2在G0/G1生长期之后迁移出细胞核相一致。在增殖期小鼠神经母细胞瘤细胞中，CK2主要定位在核中，而在有丝分裂后开始分化的细胞中CK2开始由核迁移至细胞质。在大鼠的尾壳核中检测CK2的亚细胞分布，发现细胞质中CK2活性约占全细胞的45%，在粗略突触结构提取物中CK2活性占1/3，另约10%存在于细胞核中[1, 3]。CK2在分化终末的成熟神经元内质网、突触、轴突及轴丘中的分布，均提示CK2在神经元中发挥重要作用[6]。游离的CK2α、α′、β亚基在胞质和胞核中均有分布，以α亚基在细胞核中最多[7]。
2 CK2的神经生物学功能CK2磷酸化底物的丝氨酸/苏氨酸残基，其底物上的共有识别序列为S/T-X-X-E/D。目前已知的CK2底物多达300多种，许多常见的天然蛋白质具有CK2的共有识别序列，新的CK2底物也在不断发现中[8]。CK2及其底物不仅在非神经组织广泛分布，在神经系统中也有大量表达和分布。与非神经组织相比，神经组织中的CK2底物并无本质上的差异，如参与DNA转录和翻译的底物基本一致。CK2通过磷酸化底物，调制底物的活性或稳定性，从而发挥作用[9]。
2.1 参与调控神经元发育与分化CK2及其底物参与神经元发育、分化的各个阶段，包括神经发生、轴突分支、生长锥活动和突触联系的形成[10]。通过显微注射CK2亚基mRNA的反义寡核苷酸链或某亚基的抗体等研究方法，发现在非神经细胞中细胞核内的CK2对于细胞增殖具有重要作用，是由G0期向G1期转化所必需的[2]，尽管神经元并不存在增殖的问题，但对神经元的发育研究仍有一定的指示作用。CK2可通过底物参与神经元发育与分化，其底物中参与调控神经元分化的有核因子κB的抑制蛋白(inhibitor of NF-κB, IκB)、Cut同源结构域蛋白(cut homeodomain protein)、类固醇激素受体等，参与调控神经突生成、特异性突触联系的底物包括微管相关蛋白-1B(Microtubule-associated protein-1B, MAP-1B)、生长相关蛋白-43(Growth associated protein-43, GAP-43)、cAMP依赖的蛋白激酶(cAMP-dependent protein kinase, PKA)等[11]。
如突触相关蛋白102(Synapse-associated protein 102，SAP102)是发育早期高度表达的一种支架蛋白，在突触发生过程中参与谷氨酸受体的转运及突触靶向调控。人类SAP102的突变可导致智力障碍。CK2可磷酸化SAP102 C端选择性剪接区域内的丝氨酸632位点，通过后者的磷酸化调节SAP102的运动，并促进SAP102的突触富集[12]。细胞周期素F(Cyclin F)蛋白为泛素蛋白连接酶复合体的组分，参与蛋白酶体的泛素化降解过程，为CCNF(Cyclin F)基因的编码产物。CK2可磷酸化Cyclin F的丝氨酸621位点，从而调制泛素蛋白连接酶(cyclin F)复合体的E3连接酶活性。Cyclin F的丝氨酸621位点若发生突变，CK2不能使其磷酸化，则赖氨酸48位点的泛素化活性增强[13]。CCNF基因突变和Cyclin F功能异常为散发或者家族性的肌萎缩性脊髓侧索硬化症(Amyotrophic lateral sclerosis, ALS)伴发额颞痴呆(frontotemporal dementia, FTD)的共有突变型和病理表现[14]。少突胶质细胞转录因子(Oligodendrocyte lineage transcription factor 2, Olig2)也是CK2的底物，CK2可磷酸化Olig2的三丝氨酸模体(S10、S13、S14)，调制其胶质源性致分裂功能。在脊椎动物中枢神经系统发育过程中，Olig2可保持神经前体细胞的繁殖扩增能力，保证前体细胞增殖分化为神经元或少突胶质细胞，但是Olig2也是胶质瘤的病理机制之一[15]。
2.2 参与调控突触信息传递CK2存在于神经元的细胞核和细胞质中，同时也清楚地定位于质膜以及突触后成分上[16]，并且在突触小体中有较强的活性。CK2在调节离子型谷氨酸受体α-氨基-3-羟基-5-甲基-4-异恶唑丙酸受体(α-amino-3-hydroxy-5-methyl-4-isoxazole propionate receptor, AMPA)和N-甲基-D-天门冬氨酸受体(N-methyl-D-aspartate receptor, NMDA)功能活动中发挥重要作用，通过调节AMPA及NMDA受体的表达及功能特性，从而影响神经元的兴奋性和突触传递。AMPA及NMDA受体均为CK2底物，其活性受CK2调节，抑制CK2可降低NMDA受体活性[17]。在体内外，CK2可磷酸化NMDAR的NR2B亚基及突触后致密蛋白-95(postsynaptic density-95, PSD-95)，导致受体与PSD-95相互作用中断，进而使受体在细胞表面表达减少[18]。这种内化过程是对受体激活的反应，表明CK2参与NMDA受体脱敏。另外，CK2通过活性诱导的钙内流激活Ca2+/钙调素依赖性蛋白激酶Ⅱ(Ca2+/calmodulin-dependent protein kinase Ⅱ, CaMKⅡ)，将CK2与NR2B结合到一个三聚体复合物中，也是CK2促使NMDA NR2B亚基内化的原因之一。虽然NMDA受体的NR2A亚基不是CK2的底物，但它仍可受到CK2的间接调节，因为磷酸化依赖的NR2B内吞作用导致突触处NR2A在膜上表达增加。从NR2B到NR2A的这种转换是至关重要的，并且与胚胎发育期间CK2表达的激增相对应。在下丘脑神经元中也检测到这种CK2依赖的由NR2B到NR2A亚基的转换，可使神经元兴奋性增加。另有报道，CK2可磷酸化AMPA受体亚基GluA1，促进后者在细胞表面积聚[19]。
在神经组织中，涉及突触信息传递的CK2底物除了谷氨酸受体以外，还包括另一类膜蛋白电压门控钠通道(Voltage-gated Na+ channel, NAvs)，以及参与突触囊泡重摄取的蛋白质，如突触结合蛋白(synaptotagmin)、动力蛋白1(dynamin 1)。CK2直接磷酸化电压门控钠通道NAv1，从而增强其与锚蛋白(ankyrin)的结合并在轴突始段积累，这是动作电位快速传播所必需的条件[20]。CK2抑制剂可通过消除CK2介导的成纤维细胞生长因子14(fibroblast growth factor 14, FGF14)受体磷酸化，并减少FGF14与电压门控钠通道NAv1.2和1.6的相互作用，从而降低神经元的兴奋性[20]。突触结合蛋白为单次跨膜蛋白，包含一个胞质磷脂结合区域，此区域参与介导突触囊泡与突触前膜的相互作用，而动力蛋白1则通过调节PKC磷酸化及钙离子流从而调节突触囊泡再循环。CK2可磷酸化突触结合蛋白的磷脂识别位点，并磷酸化动力蛋白1，抑制后者对蛋白激酶C(protein kinase C, PKC)的磷酸化作用，从而参与突触囊泡胞吐及内吞的突触前调节，联系突触囊泡再循环的不同信号通路[1]。这是CK2通过调制底物磷酸化从而改变其活性，产生相应生物学效应的典型代表之一。
神经肌肉接头(neuromuscular junction, NMJ)是一种特殊的突触，即突触前神经元与效应器之间的突触。已证实CK2在NMJ处大量分布，可与肌特异性受体酪氨酸激酶(muscle specific receptor tyrosine kinase, MuSK)受体互作并使其磷酸化，从而阻止NMJ的分裂。CK2与NMJ处信息传递相关的多种蛋白存在互作，包括N型乙酰胆碱受体的α/β亚基、蓬乱蛋白(dishevelled, Dsh)，并与缔合蛋白(Rapsyn)、Ras相关的C3肉毒素底物1(Ras-related C3 botulinum toxin substrate 1, Rac1)、14-3-3γ蛋白、接头蛋白Dok-7(Docking-7)有较强的互作。CK2还可磷酸化14-3-3γ的丝氨酸235位点以及Dok-7的多个丝氨酸位点。Dok-7与肌管膜上乙酰胆碱受体表达密切相关，磷酸化型Dok-7较野生型可显著增强乙酰胆碱受体在肌管膜上的富集，从而参与调控NMJ的信息传递过程[21]。
2.3 参与调节学习与记忆记忆是编码和连接感觉印象的神经网络中特定突触上的长期活动变化，而长时程增强(long-term potentiation, LTP)为研究脊椎动物神经系统的记忆程序的主流模型。CK2可通过调节LTP、突触可塑性参与调节学习与记忆。
在诱导海马LTP期间，高频电刺激后5min可检测到CK2活性的瞬时升高。脑源性神经营养因子(brain-derived neurotrophic factor, BDNF)以活性依赖的方式释放，并且通过激活CK2对突触可塑性起着调节作用，并呈剂量依赖[1]。因此，CK2本身的活性调节是以突触活性依赖的方式进行的。此外，CK2抑制剂5, 6-二氯-1-β-d-核糖基苯并咪唑(5, 6-dichloro-1-β-d-ribofuranosylbenzimidazole, DRB)可减少恐惧动机诱发的学习。与上述发现不一致的是，也有报道转染CK2显性失活的突变体可增强空间学习[22]。但不论结果如何，CK2的确参与调节学习与记忆。
CK2的底物中与突触可塑性相关的包括，参与突触囊泡膜交换和神经递质释放的蛋白磷酸酶2A(protein phosphatase type 2A, PP2A)，一些蛋白激酶如PKA、转录因子如cAMP反应元件结合蛋白(cAMP-responsive enhancer binding protein, CREB)，以及某些涉及基因表达和蛋白质合成的蛋白底物，对于LTP建立和记忆巩固均有重要意义。CK2还通过磷酸化作用修饰NMDA受体，后者在突触可塑性中起重要作用[1]。
CK2选择性抑制剂DRB和4, 5, 6, 7-四溴苯并三唑(4, 5, 6, 7-tetrabromobenzotriazole, TBB)可显著抑制海马脑片NMDA受体依赖的LTP，DRB还抑制NMDA受体介导的突触传递，但是NMDA受体无关的LTP并不受影响。因此，可推测CK2以NMDA受体为主要靶点调节突触可塑性。虽然长时程抑制(long-term depression, LTD)和LTP都与NMDA受体介导的钙离子流有关，但LTD并不受CK2抑制剂的影响，原因可能是CK2主要调制突触上的NMDA受体，而非突触外存在的NMDA受体，而突触外受体是介导LTD的主要成分。可推测CK2对LTP的选择性调节是由于其对NMDA受体的选择性调节，即CK2通过选择性修饰突触部位的NMDA受体，以受体定位特异性的方式选择性地影响LTP[23]。
2.4 神经营养与保护某些神经营养因子如BDNF、神经营养素(neurotrophin, NT)等是已知的各类型神经元分化和存活所必需的。BDNF、NT-3、NT-4可激活海马CK2，上调其活性。CK2还可通过上调PTEN(gene of phosphate and tension homology deleted on chromosome ten)磷酸化水平、改变PTEN稳定性，促进BDNF和神经生长因子(nerve growth factor，NGF)发挥神经保护作用，促进海马神经元存活[24]。
在脑缺血模型中发现CK2表达或活性水平与神经元损伤程度相关。在短暂性脑缺血模型中，脑缺血损伤敏感区域CK2有明显下调，而在脑缺血损伤抵抗区域CK2有一定水平的上调。大鼠在体局灶性脑缺血模型中，CK2表达水平自脑缺血2h开始下降，其下调持续至再灌注72h[25]。而在全脑缺血模型中，齿状回中检测到CK2活性上调[26]。采用CK2抑制剂(2E)-3-(2, 3, 4, 5-四溴苯肼)-2-丙烯酸((2E)-3-(2, 3, 4, 5-tetrabromophenyl)-2-propenoic acid, tetrabromocinnamic acid, TBCA)可造成神经元，主要是灰质损伤。相反地，在白质中CK2抑制可保护白质成分[27]。更重要的是，在脑缺血模型中发现CK2参与多个信号通路，对神经元保护具有重要作用。CK2活性下调与磷酸化丝裂原活化蛋白激酶MKK(3/6)、p38、组蛋白去乙酰酶活性抑制有关。CK2是氧化应激机制中NADPH氧化酶的负性调节子，CK2抑制诱发NADPH氧化酶2(NOX2)激活，促进了活性氧释放及促凋亡因子从线粒体中释放，最终发生神经元凋亡。
另外，发现多种天然或合成物质可通过CK2发挥神经保护作用。神经肽Apelin-13可通过其自身受体/G蛋白/CK2保护神经元，对抗内质网应激介导的凋亡[25]。一种新的外消旋3-n-丁基苯酞类似物5d可通过正性调控CK2抑制NADPH氧化酶[28]。西洛他唑的保护机制包括最大钾通道开放、上调CK2磷酸化、下调PTEN磷酸化。上述结果提示CK2参与多种信号通路，可作为神经营养与保护的靶点。
3 小结与展望蛋白激酶CK2自上世纪被发现以来，其相关研究主要在非神经细胞方面，然而近来的研究表明CK2在神经系统中也发挥着重要作用。CK2在几乎所有神经组织中大量表达，且底物繁多。也就是说，CK2与其他蛋白激酶如PKC和PKA一样，不论存在于胞质或其他区室中，可通过调制底物的磷酸化水平发挥作用。鉴于CK2底物多达365种，CK2及其底物可参与广泛而相互交叉的信号通路，在神经元的发育、分化、存活以及突触信息传递、突触可塑性等功能机制中均承担着重要角色。
如果一个信号目标包含多重信号调控位点需要其激活，则该信号就可能通过磷酸化这些位点，从而激活目标。这种机制高效但繁复，可能造成多条通路相互交叉，因此激活或者抑制该信号目标可能造成多个预期外的“靶点外效应”，而CK2就属于这种信号目标[29]。因此，未来的主要研究目标应当细化CK2相关的信号路径，明确CK2及其底物磷酸化的调节作用，实现CK2信号的微调，更好地研究CK2在神经系统中的生理、病理生理作用及机制，开发神经系统疾病新的治疗靶点。
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