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  济宁医学院学报  2019, Vol. 42 Issue (2): 122-125, 130  DOI:10.3969/j.issn.1000-9760.2019.02.011
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刘琪, 商鑫涛, 陈晨, 王国栋. 番茄SlCDJ2蛋白在大肠杆菌和酵母中的表达[J]. 济宁医学院学报, 2019, 42(2): 122-125, 130. DOI: 10.3969/j.issn.1000-9760.2019.02.011.
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LIU Qi, SHANG Xintao, CHEN Chen, WANG Guodong. The study of tomato SlCDJ2 protein expression in Escherichia coli and yeast[J]. Journal Of Jining Medical University, 2019, 42(2): 122-125, 130. DOI: 10.3969/j.issn.1000-9760.2019.02.011.
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基金项目

山东省自然科学基金博士基金(ZR2018BC032);济宁医学院大学生创新项目(100220004030);国家级大学生创新项目(201710443030);济宁医学院博士基金(600492001)

通信作者

王国栋, E-mail:gdwang@mail.edu.cll;

文章历史

收稿日期:2018-11-07
番茄SlCDJ2蛋白在大肠杆菌和酵母中的表达
刘琪 , 商鑫涛 , 陈晨 , 王国栋     
济宁医学院生物科学学院, 日照 276826
摘要目的 DnaJ蛋白作为一种广泛存在于细胞内的分子伴侣,能响应多种胁迫反应。本研究以转基因大肠杆菌和酿酒酵母为材料,研究番茄Solanum lycopersicum Chloroplast DnaJ 2(SlCDJ2)蛋白在渗透胁迫下的表达情况,为进一步在番茄中研究其功能提供初步的理论依据。方法 PCR扩增获得SlCDJ2基因,构建大肠杆菌原核表达重组质粒pET30a-SlCDJ2和酵母真核表达重组质粒pYES2-SlCDJ2,分别通过热激转化法和醋酸锂酵母转化获得转基因大肠杆菌和酵母菌株,SDS-聚丙烯凝胶电泳分析SlCDJ2蛋白大肠杆菌中的诱导表达情况,分光光度法测定转基因大肠杆菌在渗透胁迫下的生长曲线,涂布方法观察转基因酵母菌在渗透胁迫下的生长表型。结果 SlCDJ2蛋白在大肠杆菌中成功诱导表达;转基因大肠杆菌在渗透胁迫下吸光度明显高于野生型大肠杆菌,差异具有统计学意义(P < 0.05)。转基因酵母菌在渗透胁迫下的生长菌落明显好于野生型酵母菌。结论 在大肠杆菌和酿酒酵母中过表达SlCDJ2基因,有助于提高大肠杆菌和酿酒酵母对渗透胁迫的抗性。
关键词SlCDJ2蛋白    大肠杆菌    酵母    渗透胁迫    
The study of tomato SlCDJ2 protein expression in Escherichia coli and yeast
LIU Qi , SHANG Xintao , CHEN Chen , WANG Guodong     
School of Biological Sciences, Jining Medical University, Rizhao 276826, China
Abstract: Objective DnaJ protein, as a kind of molecular chaperone widely existing in cells, can respond to a variety of stress responses.In this study, transgenic Escherichia coli and Saccharomyces cerevisiae were used as materials to study the expression of tomato SlCDJ2 protein under osmotic stress, providing a preliminary theoretical basis for further studying its function in tomatoes. Methods The SlCDJ2 was obtained by PCR amplification, the recombinant plasmid pET30a-SlCDJ2 and pYES2-SlCDJ2 were constructed and transffered into E.coli and S.cerevisiae by heat shock and lithium acetate yeast transformation methods to abtain the transgenic E.coli and S.cerevisiae.Finally, SDS-polypropylene gel electrophoresis (SDS-PAGE) was used to analyze the expression of SlCDJ2 protein in E.coli, and the growth curve of transgenic E.coli under osmotic stress was measured by spectrophotometry.In addition, the growth phenotype of transgenic yeast under osmotic stress was observed by coating. Results SDS-PAGE results showed that SlCDJ2 protein was successfully induced in E.coli, and the results of spectrophotometric determination showed that the absorbance of transgenic E.coli was significantly higher than that of wild escherichia coli under osmotic stress.The growth phenotype analysis of yeast showed that the growth colony of transgenic yeast was better than that of wild yeast under osmotic stress. Conclusion The study showed that SlCDJ2 overexpression was helpful to improve the osmotic stress resistance of E.coli and S.cerevisiae.
Keywords: SlCDJ2 protein    E.coli    S.cerevisiae    Osmotic stress    

农业生产中,渗透胁迫是影响作物产量的一个重要环境因素,包括干旱胁迫和高盐胁迫。我国每年因干旱等自然灾害导致粮食减产达10%以上,而这个比例因温室效应加剧还在逐年增加[1]。因此,面对这些自然灾害,提高农业生产力,是我们亟待解决的科学问题。

DnaJ蛋白,是广泛存在于细胞内的一种分子伴侣,具有完成蛋白质折叠、解折叠、向特定细胞器运输和调节蛋白复合物解聚等功能[2]。据报道,DnaJ蛋白能参与细胞内多种生化过程和响应多种胁迫反应,进而增强植物的抗逆性[3]。大肠杆菌(Escherichia coli)是一种革兰氏阴性菌,是遗传学和生物化学研究常用的菌体。酵母作为一种真核生物,细胞对渗透压的反应是相对恒定的,比植物更易用于遗传研究。本研究中,我们首次从番茄叶片中分离克隆得到SlCDJ2基因,经过生物信息分析发现,SlCDJ2基因编码的蛋白属于DnaJ蛋白家族[4]。将SlCDJ2基因转入大肠杆菌和酵母中,与野生菌株相比,转基因大肠杆菌和酵母均提高了对渗透胁迫的抗性。报道如下。

1 材料与方法 1.1 材料

实验菌株:大肠杆菌(Escherichia coli strain BL21)和酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae strain YPH500),由山东农业大学作物生物学国家重点实验室提供。

1.2 方法 1.2.1 SlCDJ2基因的克隆及测序

在NCBI GEN EBANK数据库中查得SlCDJ2基因的mRNA序列(GenBank序列号:AK323942),设计特异引物(上游引物:ATGAGCAATTTGAGATCGAT;下游引物:CTATAGATTCTTATCGTCCTCCT),以番茄叶片的cDNA为模板,进行PCR扩增,程序为95℃预变性5min;95℃ 50s,55℃退火50s,72℃延伸1min,35个循环;72℃延伸10min。随后对PCR产物进行测序验证。

1.2.2 SlCDJ2基因在大肠杆菌中的表达

设计特异性引物,上游引物:GGATCCATGAGCAATTTGAGATCGAT,下划线是BamH Ⅰ;下游引物:GAGCTCCTATAGATTCTTATCGTCCTCCT,下划线是Sac Ⅰ。将SlCDJ2基因的编码序列采用PCR技术扩增出来,利用酶切位点BamH ⅠSac I,进行双酶切反应,将该基因编码序列连接到原核表达载体pET30a上。然后,将重组质粒转化E.coli BL21,获得阳性菌株,再将野生菌株和阳性菌株分别在20ml LB液体培养基中培养(37℃,200rpm/min),当菌液OD600=0.6时,首先将野生菌液和转基因菌液各取1ml,置于4℃冰箱内备用,再向剩余菌液加入IPTG(Isopropylthio-β-d-galactoside),使其终浓度为1mM,持续培养6h,每隔1h,取样1次,将所有样品,经10000rpm/min,离心1min,倒掉上清,菌体沉淀备用。最后,经SDS-聚丙烯酰氨凝胶电泳(SDS-PAGE)将诱导表达的蛋白分离开来[5]

1.2.3 大肠杆菌在渗透胁迫下的生长分析

为了分析含空载pET30a和含有pET30a-SlCDJ2重组质粒的大肠杆菌在正常和盐胁迫下的生长情况,首先配制IPTG终浓度为1mM,NaCl终浓度分别为200mM、400mM和800mM的LB液体培养基,各100ml。然后,取100μl OD600=0.8的菌液分别加入以上LB液体培养基中,37℃,200rpm/min,持续培养28h。同样,为了分析含空载pET30a和含有pET30a-SlCDJ2重组质粒的大肠杆菌在干旱胁迫下的生长情况,首先配制IPTG终浓度为1mM,甘露醇(Mannitol)终浓度分别为200mM、400mM和800mM的LB液体培养基,各100ml。然后,取100μl OD600=0.8的菌液分别加入以上LB液体培养基中,37℃,200rpm/min,震荡培养28h。最后,使用分光光度计检测不同时间点的菌体OD600值。以上实验均进行3次生物学重复。

1.2.4 酵母表达载体的构建

首先设计特异性引物,上游引物:GAGCTCATGAGCAATTTGAGAT CGAT,下划线是Sac Ⅰ;下游引物:GGATCCCTATAGATTCTTATCGTCCTCCT,下划线是BamH Ⅰ。采用PCR技术扩增SlCDJ2基因的编码序列。再利用Sac I和BamH Ⅰ内切酶将PCR产物和酵母表达载体pYES2进行双酶切反应,最终将SlCDJ2基因的编码序列连接到酵母表达载体pYES2上,构建重组质粒。

1.2.5 酵母遗传转化

将酵母空载pYES2和pYES2-SlCDJ2重组质粒转入酵母(Saccharomyces cerevisiae strain YPH500)中。利用醋酸锂酵母转化系统获得了阳性酵母菌株[6]

1.2.6 酵母在渗透胁迫下的生长分析

S.cerevisiae strain YPH500在YPD(yeast extract/peptone/dextrose)培养基中培养,而含有重组质粒的酵母菌株在YNBUra-(yeast nitrogen extract,(NH4)2SO4,glucose,His/trp/leu/lys和Ademine)培养基中培养。为了分析含空载pYES2和pYES2-SlCDJ2重组质粒的酵母菌在正常和渗透迫下的生长情况,首先,分别配制NaCl和Mannitol终浓度为200mM、400mM和800mM的YNBUra-固体培养基。然后,挑取阳性菌株到10ml YNBUra-液体培养基(含终浓度2%的棉子糖)中,28℃,200rpm/min,震荡培养72h后,吸取1ml培养物到25ml YNBUra-液体培养基(含终浓度2%的半乳糖,1% NP-40)中,22℃,200rpm/min,继续震荡培养48h,直至菌液OD600=1.0。吸取100μl的菌液连续稀释10倍,稀释3次,将稀释后的菌液吸取10μl点在不同浓度NaCl和Mannitol的培养基上,28℃条件下,培养5d,拍照记录。

1.3 统计学方法

所有数据结果均以x±s表示,在SPSS 18.0统计分析软件中利用t检验进行组间比较,P < 0.05,为差异有统计学意义。

2 结果与分析 2.1 SlCDJ2基因的克隆

根据NCBI GenBank数据库中的mRNA序列(GenBank序列号:AK323942),设计特异引物,以番茄叶片总RNA反转录获得的cDNA为模板,进行PCR扩增,经过琼脂糖凝胶电泳分离到一条834 bp的DNA条带,与GenBank数据库中查得的大小一致(图 1),测序结果显示序列完全正确。这些结果说明,成功地克隆得到了SlCDJ2基因。SlCDJ2基因全长为1159bp,开放阅读框为834bp,第66个核苷酸处为起始密码子ATG,第898个核苷酸处为终止密码子TAG,开放阅读框编码277个氨基酸,预测分子量为32.7kDa,等电点为9.30(http://web.expasy.org/compute_pi/)。

图 1 SlCDJ2基因核酸凝胶电泳图
2.2 SlCDJ2蛋白在大肠杆菌中的诱导表达

将转pET-SlCDJ2融合质粒的大肠杆菌阳性菌株,进行IPTG诱导6h后,将样品进行聚丙烯酰胺凝胶电泳,结果显示在大肠杆菌中有一条大约34kDa的带,诱导后的蛋白为连有组氨酸标签的融合蛋白(图 2)。这个结果说明SlCDJ2蛋白能在大肠杆菌中经诱导表达。

图 2 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳 1:pET-SlCDJ2未经IPTG诱导;2-7:分别经IPTG诱导1~6h;M:蛋白Maker
2.3 SlCDJ2蛋白大肠杆菌对渗透胁迫抗性的增强

将结果2.1中获得的转pET30a-SlCDJ2阳性菌株和转pET30a空载菌株在甘露醇模拟的干旱胁迫下,进行持续26h诱导表达,分别在1、2、4、6、8、10、12、24h和26h时间点取样检测。结果如图 3显示:在没有胁迫条件下(0mM甘露醇),转基因菌株和对照菌株的生长情况没有明显差异(图 3A)。在干旱胁迫条件下,转基因菌株的生长状况明显好于对照菌株(图 3B3C3D),只是随着胁迫程度的加深,转基因菌株和对照菌株生长情况均在变差。在进行盐胁迫处理时,如结果图 4显示:与干旱胁迫的结果极其相似(图 4A4B4C4D)。只是盐胁迫对转基因和对照菌株生长的影响明显大于干旱胁迫。总之,将番茄SlCDJ2蛋白在大肠杆菌中进行表达,增强了转基因大肠杆菌对渗透胁迫的抗性。

图 3 干旱胁迫对转SlCDJ2基因的大肠杆菌生长的影响(Mean ± SE,n=6) **代表与对照组相比存在显著差异(*P < 0.05,**P < 0.01)
图 4 盐胁迫对转SlCDJ2基因的大肠杆菌生长的影响(x±s,n=6) *代表与对照组相比存在显著差异(P < 0.05)
2.4 SlCDJ2蛋白酵母对渗透胁迫抗性的增强

为了进一步探究SlCDJ2在酵母中是否具有与在大肠杆菌中同样的功能,我们构建了pYES2-SlCDJ2酵母表达载体,并成功转化酵母,获得阳性菌株。如图 5显示:不论是在干旱胁迫下还是盐胁迫下,转pYES2-SlCDJ2的酵母菌株均比转pYES2空载的对照菌株菌落密度要大,只是随着胁迫程度加大,阳性菌株和对照菌株的菌落密度均在逐渐减小,这就说明阳性菌株的生长状况要优于对照菌株的生长状况。这些结果说明,SlCDJ2蛋白有助于增强转基因酵母对渗透胁迫的抗性。

图 5 干旱和盐胁迫对转SlCDJ2基因酵母生长的影响
3 讨论

DnaJ蛋白是生物体内广泛存在的一种参与多种生理生化过程,并响应多种胁迫的热激蛋白,最早发现于大肠杆菌中[7]。近几年,几乎在所有的生物类群中均有DnaJ蛋白的发现,且具有多种不同的生物特征[8]。Hsp70-DnaJ分子伴侣系统能够维持多种胁迫下细胞内蛋白质的稳定,进而提高生物体的抗逆性[9]。例如AtDjA2和AtDjA3蛋白有助于提高拟南芥的高温抗性[10]。AtDjB1可以通过保护细胞免受高温诱导的氧化胁迫的伤害,进而提高拟南芥的耐热性[11]。异源表达大豆GmDjp1能够显著提高大肠杆菌的高温抗性[12]。Schafleitner等[13]研究发现6个DnaJ蛋白均受到水分胁迫的诱导而上调表达,其作用可能是维持干旱胁迫下细胞内蛋白组分的稳定性,从而减轻细胞的损伤。Zhao等[14]研究表明,在大肠杆菌中异源表达拟南芥DnaJ蛋白能够增强细菌对盐的耐受性。目前,番茄中DnaJ蛋白功能研究较少,尤其是对渗透胁迫条件下其功能研究更少。因此,本研究中我们从番茄叶片中克隆得到一个DnaJ基因(SlCDJ2),该基因全长为1159 bp,开放阅读框为834 bp,编码277个氨基酸(图 1)。先前研究表明,番茄SlCDJ2基因受干旱胁迫的诱导表达[15]。在本研究中,在大肠杆菌中表达SlCDJ2蛋白(图 2),转基因大肠杆菌在干旱和盐胁迫的生长状况明显好于对照菌株(图 34),说明SlCDJ2蛋白有助于提高转基因大肠杆菌对渗透胁迫的抗性。同样,在酵母中表达SlCDJ2蛋白,转基因酵母菌株在干旱和盐胁迫下的菌落密度均高于对照菌株(图 5),说明SlCDJ2蛋白有助于转基因酵母提高对渗透胁迫的抗性。这些研究初步表明,番茄SlCDJ2基因在响应渗透胁迫过程发挥重要的功能,但SlCDJ2基因在番茄中的具体功能仍有待进一步研究。

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