2. 济宁医学院附属医院, 济宁 272029
2. Affiliated Hospital of Jining Medical University, Jining 272029, China
随着人口老龄化的进展,全球痴呆患者逐渐增加,预计将来会给家庭、社会带来巨大的精神和财产负担[1]。阿尔茨海默病(Alzheimer’s disease, AD)是最常见的痴呆类型,其发病机制至今尚未完全明确, 病理表现主要以β淀粉样蛋白(β-amyloid, Aβ)沉积形成的老年斑、tau蛋白过度磷酸化形成的神经原纤维缠结(neurofibrillary tangles, NFT)及大量神经元死亡为特征,该病的特点为起病隐匿、病情逐渐进展且不可逆。AD的诊断方法多样,但由于PET检查价格昂贵,而且Aβ、tau等生物标志物检测目前还未广泛应用于临床,所以目前诊断AD主要依靠病史、临床表现、神经心理测试,因此大多数患者在疾病早期未得到正规诊治。MicroRNAs,是长约22个核苷酸的非编码单链小RNA,是基因表达的重要调控因子,丰富表达于中枢神经系统,并可借助外泌体等跨越血脑屏障释放到外周血, 结合蛋白稳定存在于外周血。随着高通量测序技术的发展,miRNA的表达及功能分析被广泛研究,AD患者miRNA表达谱可能有特异的改变。以外周血为检测样本,具有易采集、易检测、创伤小的特点,并且可以针对老年人群进行大批量筛查,所以miRNA有望成为AD早期诊断的生物学标志物。研究表明,miRNA通过靶向负调控基因表达,参与tau蛋白磷酸化、BACE1、APP蛋白表达、细胞凋亡、突触丢失、炎症反应等与AD有关的过程,因此miRNA亦可能成为治疗AD的靶点。
1 MicroRNAMicroRNA,是长约22个核苷酸的一组非编码单链小RNA,它不编码蛋白质合成,通过与靶基因的3'非翻译区(UTR)结合来调控蛋白表达,具有高度保守性,其调控系统复杂,一个miRNA可靶向抑制多个基因表达,1个基因可被多个miRNA调控。MicroRNA参与细胞发育、增殖、分化、发育、代谢、感染、免疫、细胞凋亡、器官生物发生等过程[2]及癌症[3]、老年退行性疾病[4]等疾病。
2 microRNA与AD 2.1 MicroRNA-107MicroRNA-107与神经退行性疾病密切相关。Wang等[5]研究发现,miR-107在AD颞叶皮质及海马中表达下降,BACE1为miR-107的靶基因, 且是Aβ产生的重要基因,随着AD的进展,miR-107水平逐渐下降,BACE1蛋白水平逐渐增加,所以miR-107可能是通过调节BACE1基因表达加速疾病进展。因此,miR-107的表达水平可能成为监测病情进展的生物学标志物,还有可能通过提升脑内miR-107水平或者降低BACE1蛋白表达来延缓疾病的进展,成为治疗AD的靶点之一。曾庆宏[6]、Nelson[7]等亦发现miR-107分别在血清及脑皮质表达下调。Huang等[8]研究表明,经脑室内注射β-淀粉样蛋白1-42(Aβ1-42)诱导的AD小鼠,miRNA-107表达下调,并且出现小鼠空间记忆障碍、海马CA1区锥体细胞丢失以及长时程增强(LTP)损伤,而miR-107模拟物逆转了上述损伤过程, 此外,还降低了Aβ水平,诱导增加Aβ1-42和tau蛋白磷酸化水平。重要的是, 脑室注入Aβ1-42降低了脑源性神经营养因子水平及降低酪氨酸受体激酶B和蛋白激酶B的磷酸化,而这些变化均可被miR-107模拟物治疗逆转。因此,miR-107模拟物可能在改善AD患者空间记忆障碍等方面起作用。细胞周期蛋白依赖性激酶5(CDK5),在哺乳动物中广泛表达,其放松管制与AD有关[9]。细胞周期蛋白依赖性激酶5调节亚基1(CDK5R1)编码p35,p25为截短形式的p35, 小鼠p25的过表达引起CDK5过度活化,导致tau和APP蛋白的过度磷酸化;基因敲除CDK5,野生小鼠tau磷酸化水平减轻[10]。因此, CDK5可能参与tau蛋白过度磷酸化致AD发病。研究表明,miR-15/107在AD海马和颞叶皮层表达减少,miR-15/107可调控CDK5R1/p35的水平,增强CDK5的活性,导致tau蛋白磷酸化增加,且miR-15/107表达降低可调节BACE1基因表达增加,进而促使AD的发生[11]。AD患者脑中存在Cofilin-actin棒状结构[12],但具体机制尚不明确。Yao等[13]为明确棒状结构形成的机制,发现AD小鼠模型中,miR-107可靶向抑制cofilin表达,降低miR-107可提高cofilin蛋白水平,有活性的cofilin过表达可诱导cofilin-actin棒的形成,此过程可能与AD有关。血脑屏障和内皮细胞功能障碍的破坏与淀粉样蛋白(amyloid-beta, Aβ)的沉积有关,是AD的主要病理特征。内皮素-1(endophilin-1),是一种多功能蛋白,其过表达可增加血脑屏障通透性[14],Liu等[14]研究表明,miR-107在血脑屏障模型的人脑微血管内皮细胞(ECs)中内源性表达,而在Aβ预培养的ECs中显著下调。Aβ能破坏血脑屏障的完整性、增加血脑屏障的通透性并且抑制内皮细胞(endocells, ECs)活力。miR-107过表达在很大程度上消除了Aβ诱导的血脑屏障破坏和内皮细胞功能障碍,这与靶向调endophilin-1有关,因此,认为miR-107的过表达可以预防Aβ诱导的血脑屏障破坏和内皮细胞功能障碍。综上,miR-107可能通过调节BACE1蛋白、β-淀粉样蛋白、tau蛋白磷酸化、血脑屏障的破坏等过程参与AD的发生、发展。
2.2 MicroRNA-124MicroRNA-124丰富表达于中枢神经系统,小鼠、果蝇及人类的miR-124表达及功能分析被广泛研究。Lukiw等[15]发现,miR-124在胎儿海马组织中大量表达,在老年AD患者与同龄正常组对照发现miR-124呈下降趋势,但无统计学差异。Smith等[16]认为miR-124在AD患者脑内被下调。Kong等[17]研究表明,miR-124在AD果蝇显著下调,此外,RNA干扰降低了AD果蝇的Delta表达,延长了果蝇的寿命,改善了AD果蝇的学习缺陷,抑制Notch也可减轻AD表型,因此,miR-124可能通过调控Notch/Delta通路表达参与AD发病。miR-124调控Notch/Delta通路有可能成为治疗AD的方向,以达到改善学习能力、减轻症状、延长寿命的目的。Fang等[18]研究发现miR-124可能通过调控BACE1基因参与细胞凋亡导致AD的发生。An等[19]为明确miR-124有关AD中的发病机制,研究发现AD患者miR-124表达降低,而BACE1蛋白表达显著升高。体外研究中,miR-124可直接结合BACE1 mRNA的3’UTR,分别用miR-124模拟物、抑制物处理后BACE1 mRNA和蛋白分别为显著下调和显著升高,因此,miR-124可通过靶向调节BACE1蛋白参与AD发病。CDK5的异常激活由钙蛋白酶(CAPN)诱导的p35裂解成p25介导。Zhou等[20]研究表明,AD中下调的miR-124-3p的可靶向结合CAPN1 mRNA的3’UTR,在体外,转染miR-124-3p使CAPN1蛋白降低,p35切割成p25,并且出现剂量相关的细胞凋亡。将表达miR-124-3p的腺相关病毒颅内注射到AD小鼠,Aβ沉积显著减少,并且小鼠记忆和认知显著改善。因此增加miR-124-3p有可能通过靶向调控CAPNA以达到改善AD患者记忆及认知的目的,为AD治疗提供新靶点。突触性丢失是AD的早期病理事件,但具体分子机制不明确。Wang等[21]研究认为,在大脑不同区域miRNA表达可能不同,AD患者、小鼠的皮质、海马miR-124表达显著增加,但结果与其他研究不同,分析可能与体外研究及不同AD细胞模型有关。PTPN1参与了海马突触的形成,miR-124可靶向调控PTPN1,AD小鼠miR-124的过表达或沉默PTPN1表达导致现突触传递障碍和记忆缺陷,但若重建miR-124/PTPN1通路,则可以逆转上述过程。因此,miRNA-124/PTPN1可能是AD发病中突触障碍及记忆缺陷的重要途径,可能成为AD治疗的靶点之一。综上,miR-124在体内、体外甚至脑内不同区域的表达可能不尽相同,miR-124亦可能参与AD发病的多个过程,但研究结果需要改进以及进一步阐明。
2.3 MicroRNA-125bMicroRNA-125的差异表达被广泛研究。Ma等[22]研究表明,AD、MCI患者脑组织miRNA-125b显著升高,miRNA-125b的过表达可促进细胞凋亡。转录因子叉头框Q1(FOXQ1)是miRNA-125b的靶基因,miRNA-125b通过调控FOXQ1表达,增加CDK5和p35/25的活性,使tau蛋白磷酸化增加,从而促进AD发生。Jin等[23]研究表明,AD患者较正常对照者的miRNA-125b表达显著增加。在体外模型中,125b过表达导致炎症反应及氧化应激,促进细胞凋亡。另外,miR-125b靶向抑制鞘氨醇激酶1(SphK1)表达,显著促进APP、BACE1的表达,从而增加β-淀粉样蛋白的产生,导致AD发病。Banzhaf-Strathmann等[24]研究发现,AD患者miR-125b异常表达,初代神经元中过表达的miR-125b导致p35、cdk5、p44/42-MAPK信号上调以及tau蛋白过度磷酸化,DUSP6和PPP1CA的磷酸酶和抗凋亡因子Bcl-W作为miR-125b的直接靶点,亦被下调。抑制miR-125b则降低了tau磷酸化和激酶表达/活性。若在小鼠海马区注射miR-125b则会损害联想学习,并伴有Bcl-W、DUSP6和PPP1CA的下调,导致tau蛋白磷酸化增加, 因此,抗miR-125b可能对于AD有治疗意义。综上,miR-125b可从Aβ产生、tau蛋白磷酸化等过程参与AD发病。
2.4 MicroRNA-146aMicroRNA-146a富含于脑内, AD小鼠和患者脑细胞发现miR-146a的表达异常升高[25-26]。研究表明,miR-146a在人类新皮质及边缘系统显著表达,并且会随着AD的严重程度增加而显著增加[26]。Wang等[4]发现AD细胞模型的LRP2表达显著下降,抑制LRP2表达,Aβ1-42对细胞的毒性增加,细胞凋亡明显增加;过表达LRP2,Aβ1-42对细胞的毒性减弱,细胞凋亡减少;过表达的miRNA-146a负调控Lrp2表达,使丝氨酸/苏氨酸激酶(Akt)磷酸化增加,caspase3激活减少,导致细胞凋亡。所以miRNA-146a可能通过Lrp2 / Akt途径诱导细胞凋亡参与AD发病。因此,抑制AD患者脑内miRNA-146a的水平可能成为治疗的AD的一个突破点,但仍需大量体内实验加以验证。补体因子H(CFH)是大脑炎症反应的重要抑制因子,Lukiw等[25]研究表明,NF-kappab敏感的miR-146a介导的CFH基因表达调控可能在一定程度上调控AD大脑和应激性AD HN细胞模型中的炎症反应,因此说明抗miRNA具有对抗病理性炎症信号的有效治疗策略的潜力。TSPAN12是miR-146靶标之一,过表达的miR-146a抑制TSPAN12蛋白表达,促进βAPP产生更多的Aβ42, 从而促进AD发生[25]。MiR-146a的另一靶标是IRAK-1(白细胞介素受体相关的激酶),是T L R /I L-1R信号的重要组成部分,在大脑的促炎症反应过程中发挥重要作用[27]。Wang等[28]研究表明,ROCK1是microRNA-146a的靶基因,在细胞模型,microRNA-146a的过度表达显著抑制ROCK1蛋白表达,引起tau蛋白过度磷酸化。通过转染ROCK1 siRNA后,ROCK1蛋白水平显着下降,且Ser380/Thr382 / Thr383 PTEN磷酸化减少,Ser396 tau磷酸化增加。在小鼠模型中,给予AD小鼠microRNA146a特异性抑制剂,发现海马区的ROCK1蛋白水平升高,tau磷酸化减少,而且,AD小鼠的记忆功能部分恢复。因此,细胞模型及小鼠模型均证实microRNA-146a过表达可导致tau过度磷酸化,抑制miRNA146a可能为AD治疗带来可能,但仍需大量体内实验。综上,miRNA146a可通过靶向调节蛋白表达,参与炎症反应、细胞凋亡、tau磷酸化等多种过程,介导AD的发病。
3 小结与展望MicroRNA在转录后水平的调控功能在机体功能中发挥重要作用。随着高通量技术的发展,miRNA的差异表达及功能分析成为研究热点,通过特异改变的miRNA表达谱的发现,miRNA可能成为AD早期诊断的生物学标志物。而且,在疾病不同阶段miRNA表达谱会发生显著变化,miRNA亦有可能成为监测疾病病情严重程度和判断预后的指标。MiRNA靶向抑制多种蛋白质的翻译及表达,几乎参与所有生理过程,与神经退行性疾病及癌症等多种疾病的发生、发展密切相关,miRNA可能成为退行性疾病、癌症等疾病的治疗靶点。但是,miRNA研究又有一些问题,关于miRNA表达谱的研究,目前很多停留在生物信息学分析层面上,缺乏大量生物学证据,而且多局限在细胞和动物实验,缺少体内研究和大型队列研究,因此,很多研究结果有一定的局限性。此外,miRNA与AD有关的特异表达、机制、功能等问题还有待于进一步研究。
[1] |
Shah H, Albanese E, Duggan C, et al. Research priorities to reduce the global burden of dementia by 2025[J]. Lancet Neurol, 2016, 15(12): 1285-1294. DOI:10.1016/S1474-4422(16)30235-6 |
[2] |
Kabekkodu SP, Shukla V, Varghese VK, et al. Clustered miRNAs and their role in biological functions and diseases[J]. Biol Rev Camb Philos Soc, 2018, 93(4): 1955-1986. DOI:10.1111/brv.12428 |
[3] |
杨士勇, 江晓春. miRNA与恶性肿瘤关系研究进展[J]. 济宁医学院学报, 2013, 36(6): 438-441. DOI:10.3969/j.issn.1000-9760.2013.06.022 |
[4] |
Zhang B, Wang LL, Ren RJ, et al. MicroRNA-146a represses LRP2 translation and leads to cell apoptosis in Alzheimer's disease[J]. FEBS Lett, 2016, 590(14): 2190-2200. DOI:10.1002/1873-3468.12229 |
[5] |
Wang WX, Rajeev BW, Stromberg AJ, et al. The expression of microRNA miR-107 decreases early in Alzheimer's disease and may accelerate disease progression through regulation of beta-site amyloid precursor protein-cleaving enzyme 1[J]. J Neurosci, 2008, 28(5): 1213-1223. DOI:10.1523/JNEUROSCI.5065-07 |
[6] |
曾庆宏, 刘霞, 周芳, 等. 阿尔茨海默病患者血清中microRNAs表达谱的研究[J]. 中风与神经疾病杂志, 2016, 33(2): 123-127. |
[7] |
Nelson PT. MiR-107 is reduced in Alzheimer's disease brain neocortex:validation study[J]. J Alzheimer Dis, 2010, 21(1): 75-79. DOI:10.3233/JAD-2010-091603 |
[8] |
Shu B, Zhang X, Du G, et al. MicroRNA-107 prevents amyloid-β-induced neurotoxicity and memory impairment in mice[J]. Int J Mol Med, 2018, 41(3): 1665-1672. DOI:10.3892/ijmm.2017.3339 |
[9] |
Liu SL, Wang C, Jiang T, et al. The role of Cdk5 in Alzheimer's disease[J]. Mol Neurobiol, 2016, 53(7): 4328-4342. DOI:10.1007/s12035-015-9369-x |
[10] |
Piedrahita D, Hernández I, López-Tobón A, et al. Silencing of CDK5 reduces neurofibrillary tangles in transgenic alzheimer's mice[J]. J Neurosc, 2010, 30(42): 13966-13976. DOI:10.1523/JNEUROSCI.3637-10.2010 |
[11] |
Moncini S, Lunghi M, Valmadre A, et al. The miR-15/107 family of microRNA genes regulates CDK5R1/p35 with implications for Alzheimer's disease pathogenesis[J]. Mol Neurobiol, 2017, 54(6): 4329-4342. DOI:10.1007/s12035-016-0002-4 |
[12] |
Minamide LS, Striegl AM, Boyle JA, et al. Neurodegenerative stimuli induce persistent ADF/cofilin-actin rods that disrupt distal neurite function[J]. Nat Cell Biol, 2000, 2(9): 628-636. DOI:10.1038/35023579 |
[13] |
Yao J, Hennessey T, Flynt A, et al. MicroRNA-related cofilin abnormality in Alzheimer's disease[J]. PLoS One, 2010, 5(12): e15546. DOI:10.1371/journal.pone.0015546 |
[14] |
Liu W, Cai H, Lin M, et al. MicroRNA-107 prevents amyloid-beta induced blood-brain barrier disruption and endothelial cell dysfunction by targeting Endophilin-1[J]. Exp Cell Res, 2016, 343(2): 248-257. DOI:10.1016/j.yexcr.2016.03.026 |
[15] |
Lukiw WJ. Regulation of complement factor H (CFH) by multiple miRNAs in Alzheimer's disease (AD) brain[J]. Mol Neurobiol, 2012, 46(1): 11-19. DOI:10.1007/s12035-012-8234-4 |
[16] |
Smith P, Al Hashimi A, Girard J, et al. In vivo regulation of amyloid precursor protein neuronal splicing by microRNAs[J]. J Neurochem, 2011, 116(2): 240-247. DOI:10.1111/j.1471-4159.2010.07097.x |
[17] |
Kong Y, Wu J, Zhang D, et al. The Role of miR-124 in drosophila Alzheimer's disease model by targeting delta in notch signaling pathway[J]. Cur Mol Med, 2015, 15(10): 980-989. DOI:10.2174/1566524016666151123114608 |
[18] |
Fang M, Wang J, Zhang X, et al. The miR-124 regulates the expression of BACE1/β-secretase correlated with cell death in Alzheimer's disease[J]. Toxicol Lett, 2012, 209(1): 94-105. DOI:10.1016/j.toxlet.2011.11.032 |
[19] |
An F, Gong G, Wang Y, et al. MiR-124 acts as a target for Alzheimer's disease by regulating BACE1[J]. Oncotarget, 2017, 8(69): 114065-114071. DOI:10.18632/oncotarget.23119 |
[20] |
Zhou Y, Deng J, Chu X, et al. Role of post-transcriptional control of calpain by miR-124-3p in the development of Alzheimer's disease[J]. J Alzheimer Dis, 2019, 67(2): 571-581. DOI:10.3233/JAD-181053 |
[21] |
Wang X, Liu D, Huang HZ, et al. A novel MicroRNA-124/PTPN1 signal pathway mediates synaptic and memory deficits in Alzheimer's disease[J]. Biol Psychiatry, 2018, 83(5): 395-405. DOI:10.1016/j.biopsych.2017.07.023 |
[22] |
Ma X, Liu L. MicroRNA-125b promotes neurons cell apoptosis and Tau phosphorylation in Alzheimer's disease[J]. Neurosci Lett, 2017, 661: 57-62. DOI:10.1016/j.neulet.2017.09.043 |
[23] |
Jin Y, Tu Q. MicroRNA125b regulates Alzheimer's disease through SphK1 regulation[J]. Mol Med Rep, 2018, 18(2): 2373-2380. DOI:10.3892/mmr.2018.9156 |
[24] |
Banzhaf-Strathmann J, Benito E, May S, et al. MicroRNA-125b induces tau hyperphosphorylation and cognitive deficits in Alzheimer's disease[J]. EMBO J, 2014, 33(15): 1667-1680. DOI:10.15252/embj.201387576 |
[25] |
Lukiw WJ, Zhao Y. An NF-kappaB-sensitive micro RNA-146a-mediated inflammatory circuit in Alzheimer disease and in stressed human brain cells[J]. J Biol Chem, 2008, 283(46): 31315-31322. DOI:10.1074/jbc.M805371200 |
[26] |
Li YY, Cui JG, Hill JM, et al. Increased expression of miRNA-146a in Alzheimer's disease transgenic mouse models[J]. Neurosci Lett, 2011, 487(1): 94-98. DOI:10.1016/j.neulet.2010.09.079 |
[27] |
Cui JG, Li YY, Zhao Y, et al. Differential regulation of interleukin-1 receptor associated kinase-1(IRAK-1) and IRAK-2 by microRNA-146a and NF-kappaB in stressed human astroglial cells and in Alzheimer disease[J]. J Biol Chem, 2010, 285(50): 38951-38960. DOI:10.1074/jbc.M110.178848 |
[28] |
Wang G, Huang Y, Wang LL, et al. MicroRNA-146a suppresses ROCK1 allowing hyperphosphorylation of tau in Alzheimer's disease[J]. Sci Rep, 2016, 6: 26697. DOI:10.1038/srep26697 |